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Sistema di telemetria del segnale fisiologico (frequenza cardiaca, temperatura corporea, livello di attività)
I sistemi di telemetria wireless di segnali fisiologici impiantati sono utilizzati per misurare a lungo termine i parametri fisiologici come la freque
Dettagli del prodotto

Il sistema di telemetria wireless del segnale fisiologico impiantabile è utilizzato per la misurazione a lungo termine di vari animali come ratti coscienti e senza freni, topi, conigli, cani beagle, scimmie, pesci, eccfrequenza cardiacaTemperatura corporea e livello di attivitàAspetto parametri fisiologici. L'uso di questo sistema può garantire che gli animali possano muoversi liberamente in gabbia senza anestesia o costrizione, in modo che i segnali fisiologici misurati possano meglio riflettere le condizioni fisiologiche degli animali nel loro stato naturale. Può essere utilizzato per la ricerca biologica del ritmo e relativo monitoraggio dei segni vitali.


Il sistema di telemetria wireless del segnale fisiologico impiantabile può telemetria wireless e registrare la frequenza cardiaca, la temperatura corporea e il livello di attività degli animali sperimentali


Il sistema di telemetria wireless del segnale fisiologico impiantabile consiste in un impianto (E-Mitt), un ricevitore, cavi e un computer di registrazione e analisi VitalView. L'impianto di dimensioni 1 centimetro E-Mitt integra sensori, amplificatori e trasmettitori di segnale wireless, con specifiche multiple a seconda del segnale di misura. Il ripetitore E-Mitt impiantabile non richiede una batteria ed è alimentato da un ricevitore. Gli sperimentatori hanno seppellito l'impianto sotto la pelle dell'animale, e i segnali fisiologici sono stati raccolti dall'impianto e convertiti in corrispondenti segnali elettrici, che sono stati poi trasmessi in modalità wireless. I segnali sono stati ricevuti dal ricevitore sotto la gabbia di alimentazione e trasmessi al convertitore di dati. Dopo aver completato la conversione dei dati, sono stati inviati al processore centrale per l'elaborazione dei dati. Il sistema può collegare fino a 32 ricevitori contemporaneamente per completare esperimenti su larga scala.


Un E-Mitt è un dispositivo in miniatura impiantato in un animale, che integra sensori, amplificatori, conversione digitale, funzioni di trasmissione wireless e risolve il problema delle reazioni anti-rigetto negli organismi viventi. Gli impianti hanno specifiche per misurare vari parametri come la frequenza cardiaca biologica, la temperatura corporea e il livello di attività.

Le caratteristiche principali del sistema di telemetria wireless del segnale fisiologico impiantabile sono:


Ø Telemetria senza fili

Ø Il ripetitore E-Mitt impiantabile non ha una batteria

Monitoraggio a lungo termine - consente la telemetria continua e remota degli animali sperimentali per tutta la loro vita dopo l'impianto del dispositivo

Reporting accurato e affidabile dei dati fisiologici e comportamentali di animali coscienti e senza restrizioni



E-MitterPrincipali parametri tecnici del sistema implantare:

Intervallo di temperatura E-Mitt

33° C - 41° C

Precisione E-Mitt

± 0,1° C

G2 E-Mitter taglia/peso Taglia/peso

15,5 mm x 6,5 mm/1,1 gm g

G2 HR E-meter Dimensione/Peso Dimensione/Peso

19,5 mm x 3,5 mm/1,5 gm g

TA E-Mitter taglia/peso Taglia/peso

23 mm x 8 mm/1,6 g grammi

HR E-Mitter taglia/peso Taglia/peso

26 mm x 8 mm/2,2 g grammi

Campo di misurazione HR Campo di misurazione della frequenza cardiaca

120 - 780 BPM

Volume di attività

Attività motoria lorda solo per attività motorie lorde


Ricevitore di segnale ER4000
Ricevitore di segnale ER4000, utilizzato per caricare E-Mitter e ricevere i dati di misura trasmessi indietro da E-Mitter. Adatto per gabbie standard di alimentazione per topi grandi e piccoli.

Il ricevitore del segnaleParametri

ER-4000Dimensione dell'energia/ricevitore 56 cm x 29 cm x 7 cm
Modulo di comunicazione RS 232 seriale
Numero massimo di ricevitori di eccitazione 32
Un singolo alimentatore supporta il numero di ricevitori eccitati 4
Stimolare il ricevitore richiede spazio 30 cm (orizzontale); 20 cm (verticale)
Gamma di trasmissione E-Mitt 12 cm sopra ER-4000

Software VitalView

Il ricevitore di eccitazione e il sensore sono collegati al computer tramite il software VitalView. È possibile registrare fino a 240 canali dati, con un'applicazione tipica di 120 oggetti di prova. Per il sistema E-meter è possibile registrare un massimo di 32 oggetti di prova.


Il software VitalView può impostare parametri sperimentali e raccogliere dati. La gestione del software si connette con l'hardware e memorizza l'analisi grafica di base dei dati per la visualizzazione. Il software fornisce anche la visualizzazione dei dati statistici e può produrre dati.

Telemetria - utilizzata per monitorare la temperatura, l'attività motoria lorda e i dati della frequenza cardiaca.
Physiological and behavioral monitoring oftransgenic mice and other laboratory animals has never been simpler. Through the use of biotelemetry and a variety of available sensors, it is possible for VitalView to monitor up to seven different physiological or behavioral parameters from a single laboratory subject

Combinations of the following parameters may be monitored for multiple laboratory subjects using VitalView:
Body Core Temperature
Heart Rate
Gross Motor Activity
Running Wheel Turns
Drinking/Licking Frequency
Feeding Behavior
Ambient Temperature
Ambient Light

E-Mitter Battery-Free Implantable Transponders:
Using telemetry to provide temperature, gross motor activity and heart rate data. An E-Mitter is a small implantable transponder that is powered by capturing energy from electrical fields generated by the ER-4000 Energizer/Receiver. This allows the E-Mitter to operate without batteries and remain implanted indefinitely to monitor the subject''s temperature, activity or heart rate. As a result, high costs and downtime of explantation, refurbishment and reimplantation are avoided.


Se è necessario misurare solo la temperatura corporea interna di ratti e topi, è possibile selezionare capsule di temperatura impiantabili per misurare a distanza i dati di temperatura corporea:


riferimento:

1.Ganeshan, Kirthana et al. “Energetic Trade-Offs and Hypometabolic States Promote Disease Tolerance.” Cell vol. 177,2 (2019): 399-413.e12. doi:10.1016/j.cell.2019.01.050
2.Li, Yongguo et al. “Secretin-Activated Brown Fat Mediates Prandial Thermogenesis to Induce Satiation.” Cell vol. 175,6 (2018): 1561-1574.e12. doi:10.1016/j.cell.2018.10.016
3.Dodd, Garron T et al. “Leptin and insulin act on POMC neurons to promote the browning of white fat.” Cell vol. 160,1-2 (2015): 88-104. doi:10.1016/j.cell.2014.12.022
4.Piñol, Ramón A et al. "I neuroni Brs3 nel topo dorsomedial hypothalamus regolano la temperatura corporea, il dispendio energetico e la frequenza cardiaca, ma non l'assunzione di cibo." Nature neuroscience vol. 21,11 (2018): 1530-1540. doi:10.1038/s41593-018-0249-3
5.Li, Jin et al. “Neurotensin is an anti-thermogenic peptide produced by lymphatic endothelial cells.” Cell metabolism vol. 33,7 (2021): 1449-1465.e6. doi:10.1016/j.cmet.2021.04.019
6.Piñol, Ramón A et al. "I neuroni preottici BRS3 aumentano la temperatura corporea e la frequenza cardiaca attraverso percorsi multipli." Metabolismo cellulare vol. 33,7 (2021): 1389-1403.e6. doi:10.1016/j.cmet.2021.05.001
7.Krisko, Tibor I et al. “Dissociation of Adaptive Thermogenesis from Glucose Homeostasis in Microbiome-Deficient Mice.” Cell metabolism vol. 31,3 (2020): 592-604.e9. doi:10.1016/j.cmet.2020.01.012
8.Sustarsic, Elahu G et al. “Cardiolipin Synthesis in Brown and Beige Fat Mitochondria Is Essential for Systemic Energy Homeostasis.” Cell metabolism vol. 28,1 (2018): 159-174.e11. doi:10.1016/j.cmet.2018.05.003
9.Heine, Markus et al. “Lipolysis Triggers a Systemic Insulin Response Essential for Efficient Energy Replenishment of Activated Brown Adipose Tissue in Mice.” Cell metabolism vol. 28,4 (2018): 644-655.e4. doi:10.1016/j.cmet.2018.06.020
10.Dodd, Garron T et al. “A Hypothalamic Phosphatase Switch Coordinates Energy Expenditure with Feeding.” Cell metabolism vol. 26,2 (2017): 375-393.e7. doi:10.1016/j.cmet.2017.07.013
11.Keipert, Susanne et al. “Long-Term Cold Adaptation Does Not Require FGF21 or UCP1.” Cell metabolism vol. 26,2 (2017): 437-446.e5. doi:10.1016/j.cmet.2017.07.016
12.Wang, Tongfei A et al. “Thermoregulation via Temperature-Dependent PGD2 Production in Mouse Preoptic Area.” Neuron vol. 103,2 (2019): 309-322.e7. doi:10.1016/j.neuron.2019.04.035
13.Chavan, Rohit et al. “Liver-derived ketone bodies are necessary for food anticipation.” Nature communications vol. 7 10580. 3 Feb. 2016, doi:10.1038/ncomms10580
14.Jiang, Lin et al. “Leptin receptor-expressing neuron Sh2b1 supports sympathetic nervous system and protects against obesity and metabolic disease.” Nature communications vol. 11,1 1517. 23 Mar. 2020, doi:10.1038/s41467-020-15328-3
15. Walker, William H 2nd et al. “Acute exposure to low-level light at night is sufficient to induce neurological changes and depressive-like behavior.” Molecular psychiatry vol. 25,5 (2020): 1080-1093. doi:10.1038/s41380-019-0430-4
16.Zhang, Xue-Ying et al. “Huddling remodels gut microbiota to reduce energy requirements in a small mammal species during cold exposure.” Microbiome vol. 6,1 103. 8 Jun. 2018, doi:10.1186/s40168-018-0473-9
17.Ingiosi, Ashley M et al. “A Role for Astroglial Calcium in Mammalian Sleep and Sleep Regulation.” Current biology : CB vol. 30,22 (2020): 4373-4383.e7. doi:10.1016/j.cub.2020.08.052
18.Padilla, Stephanie L et al. “Kisspeptin Neurons in the Arcuate Nucleus of the Hypothalamus Orchestrate Circadian Rhythms and Metabolism.” Current biology : CB vol. 29,4 (2019): 592-604.e4. doi:10.1016/j.cub.2019.01.022




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